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Epitalon

Mécanisme d'action de l'Épitalon : comment fonctionne ce peptide ?

Le peptide Epitalon (AEDG ; Ala-Glu-Asp-Gly) n'a pas de mécanisme d'action cliniquement confirmé. Des études de laboratoire suggèrent qu'il pourrait influencer la télomérase et l'expression de la hTERT, la chromatine et la transcription des gènes, les voies de la mélatonine liées à la glande pinéale, les mécanismes de défense antioxydante, le fonctionnement mitochondrial et les processus liés au vieillissement cellulaire, bien que la plupart des preuves mécanistiques proviennent encore d'études précliniques ou in vitro. [1]

La façon la plus utile de comprendre le mécanisme d'action de l'Épitalon n'est donc pas de le percevoir comme une voie unique menant d'un récepteur à une réponse biologique spécifique, mais plutôt comme un ensemble d'effets moléculaires observés expérimentalement. Certains d'entre eux ont été reproduits dans des cultures de cellules humaines, tandis que d'autres proviennent d'études sur des animaux, de tissus isolés, de modélisation moléculaire ou d'anciennes études ex vivo sur des cellules humaines. Une revue exhaustive de l'Épitalon de 2025 a mis en évidence plusieurs voies biologiques potentielles, mais le mécanisme pharmacodynamique complet reste encore inexpliqué. [1]

Quel est le mécanisme d'action proposé de l'Épitalon ?

Le mécanisme d'action proposé pour l'Épitalon implique plusieurs voies biologiques qui se chevauchent, plutôt qu'une seule cible moléculaire fixe. Celles-ci comprennent la régulation de la télomérase et de la hTERT, des modifications de la transcription génique et de l'accessibilité de la chromatine, la modulation des voies de la mélatonine pinéale ainsi que des effets sur le stress oxydatif, les mitochondries, la prolifération et la différenciation cellulaires. [1–6]

Les preuves mécanistiques les plus solides proviennent actuellement d'études in vitro sur des cellules humaines, et non d'études de pharmacologie clinique.

L'une des principales voies d'action concerne la préservation des télomères. Des expériences antérieures menées sur des fibroblastes humains ont montré une induction de l'activité de la télomérase et un allongement des télomères après exposition à l'Epithalon. [2] Plus important encore, une étude in vitro plus récente, menée en 2025 sur des cellules humaines, a évalué quantitativement l’ARNm de hTERT, l’activité de la télomérase, la longueur des télomères ainsi que l’allongement alternatif des télomères (ALT) tant dans les lignées cellulaires saines que cancéreuses. Dans les fibroblastes et les cellules épithéliales saines, on a observé des télomères plus longs, accompagnés d’une expression accrue de hTERT et d’une activité télomérase plus élevée. [3]

Le deuxième parcours proposé concerne la régulation génique. Dans des expériences menées sur des cellules souches humaines après l'application de l'AEDG, on a observé une expression et une synthèse accrues des protéines liées à la différenciation neuronale, tandis que la modélisation informatique suggérait que le peptide pourrait interagir avec des régions spécifiques de l'histone H1 impliquées dans l'organisation de l'ADN. [4]

Le troisième parcours proposé concerne la glande pinéale et la synthèse de la mélatonine. Dans des cultures de pinéalocytes de rat, on a observé un effet sur l'AANAT et le CREB phosphorylé, deux éléments moléculaires impliqués dans la production de mélatonine. [5] Cependant, une autre étude portant sur une glande pinéale de rat isolée n'a pas montré d'augmentation mesurable de la sécrétion de mélatonine, ce qui montre que ce mécanisme n'est pas constamment confirmé dans tous les systèmes expérimentaux. [6]

Epitalon ne devrait donc pas être décrit comme un peptide agissant par l'intermédiaire d'un récepteur unique confirmé ou d'une voie de signalisation universellement démontrée.

Comment l'épitalon peut-il interagir avec la glande pinéale ?

L'épitalon peut influencer la fonction de la glande pinéale en modifiant les voies moléculaires liées à la synthèse de la mélatonine, en particulier la signalisation de l'AANAT et du pCREB. Cependant, cet effet a principalement été démontré dans des cultures cellulaires et des modèles de vieillissement chez l'animal et le primate, et n'a pas été confirmé comme un effet direct et constant chez l'humain. [1,5–8]

Le lien avec la glande pinéale revêt une importance centrale dans l'histoire de l'Épitalon. La séquence AEDG a été développée sur la base de recherches sur la préparation peptidique Épithalamine dérivée de la glande pinéale, et plus tard, l'AEDG a également été détectée dans le complexe polypeptidique de la glande pinéale. [1]

D'un point de vue mécaniste, une étude importante sur des cultures de pinéalocytes de rat a analysé l'arylalkylamine N-acétyltransférase, ou AANAT, une enzyme jouant un rôle clé dans la biosynthèse de la mélatonine, ainsi que la protéine liée à la transcription pCREB. L'épitalon augmentait la synthèse de l'AANAT et du pCREB et était associé à une concentration accrue de mélatonine dans le milieu de culture. [5] Ces effets étaient en outre potentialisés en présence de noradrénaline.

Ces résultats suggèrent que l'AEDG pourrait influencer les mécanismes intracellulaires contrôlant la production de mélatonine dans la glande pinéale, plutôt que d'agir simplement comme une molécule semblable à la mélatonine.

Cependant, une étude contrôlée sur un organe isolé complique cette interprétation. Djeridane et ses collaborateurs ont exposé les pinéalocytes de jeunes rats et de rats âgés à l'Ala-Glu-Asp-Gly et n'ont observé aucune augmentation significative ni de la sécrétion basale de mélatonine ni de la sécrétion stimulée par l'isoprotérénol, un agoniste bêta-adrénergique. [6]

Les études menées sur des organismes entiers ont donné des résultats plus positifs. Des études sur des macaques rhésus vieillissants ont mis en évidence des niveaux de mélatonine nocturnes ou vespéraux plus élevés après l'administration d'Épithalon, ainsi qu'une normalisation partielle du rythme de sécrétion du cortisol. [7] La littérature plus ancienne décrit également un effet sur les rythmes de la mélatonine chez les personnes âgées, bien que ces données impliquant des humains soient nettement moins solides que les essais cliniques randomisés modernes.

La divergence apparente peut résulter de différences entre les organes isolés, les pinéalocytes cultivés et les organismes entiers. Cela signifie que l'affirmation „ L'Épitalon stimule directement la glande pinéale ” serait une simplification excessive.

Une discussion plus approfondie sur la nomenclature et l'origine liées à la glande pinéale se trouve dans l'article interne „ Qu'est-ce que le peptide Epitalon ? Définition, noms et séquence ”.

Est-ce que l'épitalon affecte l'expression des gènes ?

Oui. L'épitalon a modifié l'expression des gènes dans plusieurs systèmes expérimentaux, notamment dans des cellules souches humaines, des lymphocytes humains en culture et des tissus animaux. Ces résultats confirment une activité moléculaire, mais ne prouvent pas que l'épitalon peut reprogrammer l'expression des gènes de manière sûre ou prévisible chez les êtres vivants. [4,8–11]

L'hypothèse concernant la régulation des gènes est soutenue par plusieurs types de preuves distinctes.

Dans une étude in vitro de 2020 menée sur des cellules souches mésenchymateuses de la gingive humaine, l'AEDG a multiplié par environ 1,6 à 1,8 l'expression de l'ARNm de la nestine, de GAP43, de la β-tubuline III et de la doublecortine. La synthèse protéique de ces mêmes marqueurs de différenciation neurogène a également augmenté. [4]

Les chercheurs ont ensuite utilisé la modélisation moléculaire pour élucider le mécanisme potentiel de cet effet. L'AEDG présentait la plus forte interaction prédite avec les histones de liaison H1/6 et H1/3, en particulier dans les régions des histones impliquées dans la liaison à l'ADN. Les auteurs ont suggéré qu'une perturbation de l'interaction histone-ADN pourrait accroître l'accessibilité de certains gènes au processus de transcription. [4]

Cela reste cependant un modèle mécaniste et non une preuve directe qu'après l'administration d'Epitalon chez l'homme, il se produit un déplacement des histones.

Des études biophysiques in vitro distinctes ont montré que l'Epithalon marqué par fluorescence peut pénétrer dans des cellules HeLa en culture, y compris dans le noyau et le nucléole, et interagir de diverses manières avec des séquences d'oligonucléotides d'ADN spécifiques. [9] Les chercheurs ont décrit des interactions préférentielles avec certaines séquences contenant CNG et CAG.

Des études ex vivo plus anciennes sur des cellules humaines indiquent également un impact possible sur la chromatine. Dans des lymphocytes cultivés provenant de personnes âgées après une exposition à l'Epitalon, on a observé l'activation de gènes ribosomiques et la décondensation de certaines zones d'hétérochromatine. [10]

Les études de puces à ADN sur des animaux fournissent des données supplémentaires. L'épithalon a modifié l'expression de nombreux transcripts dans le cœur et le cerveau de souris, et le profil des modifications dépendait du tissu étudié. Ces données soutiennent le concept d'une régulation de la transcription dépendante des tissus, mais n'indiquent pas un ensemble universel unique de gènes réagissant à l'épitalon.

La conclusion la plus logique est donc que l'Épitalon peut influencer expérimentalement les processus liés à l'expression des gènes, tandis que sa cible moléculaire initiale reste incertaine.

Est-ce que l'épitalon augmente l'expression de l'ARNm de hTERT ?

Oui. Dans une étude in vitro de 2025, l'Épitalon a augmenté les taux d'ARNm de hTERT dans des fibroblastes humains normaux et des cellules épithéliales, ainsi que dans deux lignées cellulaires de cancer du sein. Cependant, l'augmentation de l'expression de hTERT n'a pas entraîné la même réponse de la télomérase dans tous les types cellulaires. [3]

Cette distinction est l'un des éléments les plus importants des recherches récentes sur l'Épitalon.

Le gène hTERT code pour le composant protéique catalytique de la télomérase. Dans la plupart des cellules somatiques normales, l'activité de la télomérase est faible ou absente, tandis que de nombreuses cellules cancéreuses maintiennent leurs télomères par l'intermédiaire de la télomérase ou de mécanismes alternatifs.

Al-Dulaimi et ses collègues ont exposé des fibroblastes normaux IBR.3, des cellules épithéliales mammaires humaines normales et des lignées cellulaires de cancer du sein 21NT et BT474 à l'Épitalon. Une augmentation du niveau d'ARNm de la hTERT a été observée dans les quatre types de cellules. [3]

Dans les lignées tumorales, l'expression de hTERT augmentait significativement : la publication décrit une augmentation d'environ 12 fois dans les cellules 21NT à l'une des concentrations expérimentales et d'environ 5 fois dans les cellules BT474 à une autre concentration. Les cellules normales montraient également une expression accrue de hTERT après des périodes d'exposition plus longues. [3]

Cependant, le niveau d'ARNm de hTERT et l'activité enzymatique de la télomérase ne se comportaient pas de manière identique.

Dans les cellules normales, l'Épitalon augmentait de manière significative l'activité de la télomérase — d'environ quatre fois dans la lignée de fibroblastes IBR.3 et d'environ 26 fois dans le modèle de cellules épithéliales de la glande mammaire par rapport aux cellules n'ayant pas reçu le peptide dans cette expérience. En revanche, dans les lignées tumorales, on a observé une augmentation de l'ARNm de hTERT sans augmentation significative correspondante de l'activité enzymatique de la télomérase. [3]

Les auteurs ont proposé plusieurs explications possibles, notamment la présence de variants d'épissage alternatifs de hTERT. Ils ont également constaté des signes indiquant que les lignées cellulaires tumorales maintenaient ou allongeaient leurs télomères par le biais de l'ALT, c'est-à-dire un mécanisme alternatif d'allongement des télomères. [3]

Cela a de l'importance car cela montre que la transcription de hTERT, l'activité fonctionnelle de la télomérase et l'allongement des télomères sont des critères d'évaluation de la biologie cellulaire qui sont liés mais non interchangeables.

L'étude reste une expérience in vitro sur des cultures cellulaires. Elle ne prouve pas qu'après l'administration d'Epitalon chez l'homme, l'expression de la hTERT augmente dans les tissus de la même manière.

Comment l'Épitalon peut-il influencer le vieillissement cellulaire ?

L'épitalon pourrait théoriquement influencer le vieillissement cellulaire en maintenant les télomères, en modifiant l'accessibilité de la chromatine, le fonctionnement mitochondrial, en régulant le stress oxydatif, l'apoptose et la prolifération cellulaire. Cependant, les preuves de ces effets proviennent principalement de cultures cellulaires et de modèles animaux, et non d'études anti-âge contrôlées chez l'humain. [2–4,11–14]

Le raccourcissement des télomères est l'un des éléments du vieillissement cellulaire réplicatif. Des expériences plus anciennes sur des fibroblastes fœtaux humains ont montré que les cellules traitées par l'Épithalon présentaient des télomères plus longs et se divisaient plus longtemps que les cellules témoins, qui avaient auparavant perdu leur capacité de prolifération. [2]

Une étude sur des cellules humaines de 2025 a également montré un allongement des télomères dans les fibroblastes normaux et les cellules épithéliales après une exposition prolongée à l'Épitalon. [3]

Une autre voie liée au vieillissement concerne le fonctionnement des mitochondries. Dans des cellules pinesales humaines vieillissantes cultivées, l'AEDG a multiplié par environ 1,5 l'intensité de la coloration au MitoTracker et réduit l'expression de la protéine ribosomale L7A d'environ 22%. Les auteurs ont interprété ce résultat comme une possible normalisation des modifications mitochondriales et ribosomales liées au vieillissement cellulaire. Il s’agissait toutefois d’une expérience in vitro sur des cellules humaines, et non d’une étude clinique sur le vieillissement. [11]

Le stress oxydatif est un autre mécanisme proposé.

Dans un modèle de cellules épithéliales rétiniennes humaines de 2025, une forte concentration de glucose augmentait le taux de ROS et altérait l'expression des gènes antioxydants. L'épitalon réduisait les ROS et limitait la baisse de l'expression de SOD2, de la catalase et de l'HMOX1 liée à la forte concentration de glucose aux concentrations expérimentales étudiées. [12]

Des études animales antérieures ont également montré des modifications de la peroxydation lipidique et des systèmes d'enzymes antioxydantes. [13]

Cependant, le tableau concernant l'activité antioxydante n'est pas uniforme. Dans certaines expériences, des niveaux intracellulaires d'ERO modifiés ou même augmentés ont été observés dans des conditions spécifiques, tandis que d'autres études ont indiqué que l'Épitalon ne se comporte pas comme un simple piégeur direct de radicaux libres.

Pour cette raison, il est plus exact de décrire l'Épitalon comme un modulateur potentiel des voies liées au stress oxydatif plutôt que simplement comme un „ peptide antioxydant ”.

L'effet sur la prolifération cellulaire et l'apoptose a également été observé. Des études expérimentales sur des fibroblastes cutanés ont montré une augmentation des marqueurs de prolifération et une diminution de l'apoptose liée aux caspases lors du vieillissement cellulaire in vitro, tandis que dans d'autres expériences dépendantes du type tissulaire, un effet inhibiteur plutôt que stimulateur a été observé.

Ces différences renforcent un principe important : l'Épitalon semble induire des effets biologiques dépendants du contexte et du type de tissu, plutôt que d'agir comme un „ interrupteur anti-âge ” universel.

Quels mécanismes proposés sont soutenus exclusivement par des données précliniques ?

La majorité des mécanismes d'action proposés pour l'Épitalon reposent encore sur des données précliniques. Cela concerne la liaison directe aux histones, l'interaction avec des séquences d'ADN spécifiques, la régulation des voies antioxydantes, l'effet sur les mitochondries, la différenciation neurogène, la proliferation des cellules rétiniennes, la régulation génique spécifique aux tissus ainsi que de nombreuses voies immunologiques et endocriniennes. Ces résultats proviennent principalement d'études cellulaires, de tissus isolés, de modèles animaux ou d'analyses informatiques.

Les preuves peuvent être résumées comme suit :

Le mécanisme proposé Principal type de preuve Interprétation actuelle
Augmentation de l'expression de la hTERT Cultures de cellules humaines Directement observé in vitro [3]
Activation de la télomérase Cultures de cellules humaines Observée dans des cellules en culture saines [2,3]
Allongement des télomères Cultures de cellules humaines Observé in vitro ; signification clinique inconnue [2,3]
Activation de l'ALT Cultures de cellules tumorales Observée in vitro dans deux lignées cellulaires tumorales [3]
Interaction avec l'histone H1 Modélisation moléculaire + études de liaison en laboratoire Hypothèse mécaniste [4]
Interaction avec les séquences d'ADN Études biophysiques et cellulaires Démontré in vitro [9]
Décondensation de la chromatine Lymphocytes cultivés de personnes âgées Preuves ex vivo [10]
Modulation de l'AANAT/pCREB Culture de pinéalocytes de rat Données précliniques [5]
Impact sur le rythme de la mélatonine Rats et vieux rhésus ; données humaines anciennes limitées Résultats suggérant un effet, mais sans confirmation clinique définitive [6–8]
Régulation des gènes antioxydants Culture de cellules rétiniennes humaines et expérimentation animale Données précliniques [12,13]
Modifications mitochondriales Cellules pinéales humaines vieillissantes cultivées In vitro [11]
Différenciation neurogène Culture de cellules souches humaines In vitro [4]

Cette classification est particulièrement importante lors de la création de réponses de type AEO. Une affirmation telle que „ L'épitalon se lie aux histones et active les gènes anti-vieillissement ” simplifierait excessivement les données disponibles.

La littérature présentée permet d'avancer avec plus de prudence que l'interaction avec les histones est un mécanisme épigénétique proposé, soutenu par la modélisation et des observations expérimentales de la liaison, tandis que les conséquences de ce processus chez les humains vivants restent non prouvées.

De même, le fait que l'épitalon augmente les marqueurs de différenciation neuronale dans la culture de cellules souches ne prouve pas la neurogenèse dans le cerveau humain adulte.

Quelles affirmations mécanistiques restent non confirmées chez l'humain ?

Il n'a pas été prouvé que l'épitalon active significativement la télomérase dans l'ensemble du corps humain, allonge les télomères chez l'humain in vivo, inverse le vieillissement cellulaire, rajeunit la glande pinéale, rétablit la fonction normale du rythme circadien, augmente la neurogenèse, prévient les maladies liées à l'âge ou prolonge la vie humaine.

La distinction entre la plausibilité biologique du mécanisme et la confirmation clinique est essentielle pour une interprétation correcte des recherches sur l'Epitalon.

Les preuves concernant hTERT en sont un bon exemple. Des chercheurs ont démontré une augmentation de l'expression de hTERT et de l'activité de la télomérase dans des cellules humaines normales en culture. [3] Cela confirme l'effet biologique en laboratoire. Cependant, cela ne prouve pas qu'une réaction équivalente se produit simultanément dans la moelle osseuse, le cerveau, le foie, les vaisseaux sanguins, la peau ou d'autres tissus humains.

De même, les lymphocytes cultivés de la sorte prélevés chez des personnes âgées présentaient des modifications de la structure de la chromatine après une exposition à l'Épitalon. [10] Cela ne confirme pas un „ rajeunissement épigénétique ” systémique.

Les résultats concernant la mélatonine restent également incomplets. Des études sur des animaux et des primates suggèrent que l'épitalon pourrait influencer les rythmes de mélatonine liés à l'âge, mais une étude sur la glande pinéale de rat isolée n'a pas montré d'augmentation directe de sa sécrétion. [6] Il manque de grandes études randomisées contemporaines montrant que ce mécanisme se traduit par une amélioration cliniquement significative du sommeil ou des troubles du rythme circadien chez l'humain.

Cette même limitation s'applique au stress oxydatif. Les modifications de SOD2, de la catalase, de HMOX1, des ROS, de la peroxydation lipidique ou des marqueurs mitochondriaux sont des observations mécanistiques précieuses, mais aucune d'entre elles ne prouve à elle seule un ralentissement du vieillissement humain.

La relation entre la régulation des télomères et la biologie des tumeurs nécessite une attention particulière. Une étude réalisée en 2025 a mis en évidence un allongement des télomères non seulement dans les cellules saines, mais également dans les lignées cancéreuses, où l'activité de l'ALT semblait jouer un rôle prépondérant, et non une activité accrue de la télomérase. [3]

Cela ne prouve pas que l'Épitalon provoque le cancer ni qu'il guérit les tumeurs. Cela montre en revanche que les mécanismes de maintien des télomères dépendent fortement du type cellulaire et que les conclusions mécanistiques ne doivent pas être simplifiées à l'affirmation selon laquelle „ l'activation de la télomérase est synonyme de longévité ”.

Une discussion plus approfondie des preuves cliniques se trouve dans l'article interne „ Peptide Epitalon : Le guide complet fondé sur des preuves ”.

Limites des recherches actuelles sur le mécanisme d'action

L'Épitalon dispose d'une littérature mécaniste relativement vaste, mais ces preuves présentent plusieurs limites récurrentes.

Tout d'abord, de nombreuses expériences utilisent des concentrations in vitro et des temps d'exposition qui ne peuvent pas être automatiquement transposés aux concentrations atteignables dans les tissus humains.

Deuxièmement, une grande partie de la littérature ancienne concernant l'Epitalon provient d'un groupe de chercheurs relativement restreint associé au programme de recherche sur les peptides de Khavinson. Des travaux indépendants plus récents, tels que l'étude sur les ovocytes de 2022 et les études sur les télomères et les cellules rétiniennes de 2025, élargissent la base de données probantes, mais ne fournissent toujours pas de confirmation clinique.

Troisièmement, les résultats mécanistiques sont parfois incohérents. La littérature concernant la mélatonine contient à la fois des résultats positifs et des absences d'effet. Les résultats concernant le stress oxydatif varient selon le tissu et le modèle. De même, l'impact sur la prolifération dépend du type de tissu.

Quatrièmement, l'amarrage moléculaire montre si une interaction donnée est structurellement possible, mais il ne prouve pas qu'elle se produit réellement à un degré biologiquement significatif chez l'humain.

Enfin, des biomarqueurs tels que la hTERT, la longueur des télomères, les ERO, le pCREB, la SOD2 ou le marquage mitochondrial constituent des critères d'évaluation moléculaires de substitution. Il ne faut pas les assimiler automatiquement à une amélioration de l'espérance de vie en bonne santé, à la prévention des maladies ou à l'allongement de la vie humaine.

Avis de non-responsabilité

Cet article a un caractère exclusivement éducatif et scientifico-informatif et ne constitue pas un avis médical, un diagnostic, des recommandations thérapeutiques, des instructions concernant le dosage ou une recommandation d'utilisation de l'Épitalon. L'Épitalon/Épithalon (AEDG ; Ala-Glu-Asp-Gly) n'est pas une thérapie approuvée par la FDA pour le vieillissement, les troubles du sommeil, les problèmes liés aux télomères ou d'autres utilisations abordées dans cet article. Les documents actuels de la FDA indiquent également que l'agence n'a pas identifié de données de sécurité suffisantes concernant les préparations composées contenant de l'Épitalon et que la désignation antérieure de médicament orphelin concernant la rétinite pigmentaire ne signifiait pas une approbation par la FDA pour cette indication. En juillet 2026, la FDA analysait toujours formellement les substances actives liées à l'Épitalon dans le contexte des préparations magistrales, ce qui souligne en outre que l'évaluation réglementaire et l'approbation clinique sont des questions distinctes. Les preuves mécanistes discutées ci-dessus proviennent principalement d'études in vitro, d'études sur des animaux, d'études ex vivo et d'analyses informatiques, et ne confirment pas l'efficacité clinique ou la sécurité à long terme chez l'homme.

Références

[1] Araj, S. K., Brzezik, J., Mądra-Gackowska, K., & Szeleszczuk, Ł. (2025). Aperçu de l'Épitalon — Tétrapeptide pinéal hautement bioactif aux propriétés prometteuses. International Journal of Molecular Sciences, 26(6), 2691. https://doi.org/10.3390/ijms26062691

[2] Khavinson, V. K., Bondarev, I. E., & Butyugov, A. A. (2003). Le peptide Epithalon induit l'activité de la télomérase et l'allongement des télomères dans les cellules somatiques humaines. Bulletin de Biologie et de Médecine Expérimentales, 135(6), 590–592. https://doi.org/10.1023/A:1025493705728

[3] Al-Dulaimi, S., Thomas, R., Matta, S., & Roberts, T. (2025). L'épitalon augmente la longueur des télomères dans des lignées cellulaires humaines par le biais d'une régulation à la hausse de la télomérase ou de l'activité de l'ALT. Biogérontologie, 26(5), l'article 178. https://doi.org/10.1007/s10522-025-10315-x

[4] Khavinson, V., Diomede, F., Mironova, E., Linkova, N., Trofimova, S., Trubiani, O., Caputi, S., & Sinjari, B. (2020). AEDG peptide (Epitalon) stimulates gene expression and protein synthesis during neurogenesis: Possible epigenetic mechanism. Molécules, 25(3), 609. https://doi.org/10.3390/molecules25030609

[5] Khavinson, V. K., Linkova, N. S., Kvetnoy, I. M., Kvetnaia, T. V., Polyakova, V. O., & Korf, H.-W. (2012). Mécanismes cellulaires et moléculaires de la régulation peptidique de la synthèse de la mélatonine en culture de pinéalocytes. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 153(2), 255–258. https://doi.org/10.1007/s10517-012-1689-5

[6] Djeridane, Y., Khavinson, V. K., Anisimov, V. N., & Touitou, Y. (2003). Effet d'un tétrapeptide pinéal synthétique (Ala-Glu-Asp-Gly) sur la sécrétion de mélatonine par la glande pinéale de rats jeunes et âgés. Journal of Endocrinological Investigation, 26(3), 211–215. https://doi.org/10.1007/BF03345159

[7] Goncharova, N. D., Khavinson, V. K., & Lapin, B. A. (2001). Regulatory effect of Epithalon on production of melatonin and cortisol in old monkeys. Bulletin de biologie et de médecine expérimentales, 131(4), 394–396. https://doi.org/10.1023/A:1017928925177

[8] Korkushko, O. V., Lapin, B. A., Goncharova, N. D., Khavinson, V. K., Shatilo, V. B., Vengerin, A. A., Antoniuk-Shcheglova, I. A., & Magdich, L. V. (2007). Effet normalisateur des peptides de la glande pinéale sur le rythme quotidien de la mélatonine chez les singes âgés et les personnes âgées. Progrès en gérontologie, 20(1), 74–85. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17969590/

[9] Fedoreyeva, L. I., Kireev, I. I., Khavinson, V. K., & Vanyushin, B. F. (2011). Pénétration de courts peptides marqués par fluorescence dans le noyau de cellules HeLa et interaction spécifique in vitro des peptides avec des désoxyribooligonucléotides et l'ADN. Biochimie (Moscou), 76(11), 1210–1219. https://doi.org/10.1134/S0006297911110022

[10] Khavinson, V. K., Lezhava, T. A., Monaselidze, J. R., Jokhadze, T. A., Dvalishvili, N. A., Bablishvili, N. K., & Trofimova, S. V. (2003). Le peptide Epitalon active la chromatine à un âge avancé. Neuro Endocrinology Letters, 24(5), 329–333. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14647006/

[11] Ivko, O. M., Drobintseva, A. O., Leont’eva, D. O., Kvetnoy, I. M., Polyakova, V. O., & Linkova, N. S. (2021). Influence of AEDG and KE peptides on mitochondrial staining and the expression of ribosomal protein L7A with aging of the human pineal gland and thymus cell in vitro. Progrès en gérontologie, 11, 261–267. https://doi.org/10.1134/S2079057021030061

[12] Gatta, M., Dovizio, M., Milillo, C., Ruggieri, A. G., Sallese, M., Antonucci, I., Trofimov, A., Khavinson, V., Trofimova, S., Bruno, A., & Ballerini, P. (2025). Le tétrapeptide antioxydant Epitalon améliore la cicatrisation retardée des plaies dans un modèle in vitro de rétinopathie diabétique. Stem Cell Reviews and Reports, 21(6), 1822–1834. https://doi.org/10.1007/s12015-025-10911-x

[13] Kozina, L. S., Arutjunyan, A. V., & Khavinson, V. K. (2007). Propriétés antioxydantes des peptides géroprotecteurs de la glande pinéale. Archives of Gerontology and Geriatrics, 44(Suppl. 1), 213–216. https://doi.org/10.1016/j.archger.2007.01.029

[14] Lin’kova, N. S., Drobintseva, A. O., Orlova, O. A., Kuznetsova, E. P., Polyakova, V. O., Kvetnoy, I. M., & Khavinson, V. K. (2016). Régulation peptidique des fonctions des fibroblastes cutanés lors de leur vieillissement in vitro. Bulletin de biologie expérimentale et de médecine, 161(1), 175–178. https://doi.org/10.1007/s10517-016-3370-x

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