Na jakie neuroprzekaźniki wpływa Semax?
Semax działa jednocześnie na wiele układów neuroprzekaźnikowych. Udokumentowane efekty obejmują wpływ na serotoninę, dopaminę, GABA, glicynę, acetylocholinę i norepinefrynę, co czyni go jednym z najszerzej działających syntetycznych peptydów badanych we współczesnej neuronauce. Neuroprzekaźniki to substancje chemiczne, za pomocą których komórki nerwowe komunikują się ze sobą. Każdy z nich pełni inną funkcję – reguluje nastrój, pamięć, ruch, reakcje na stres i ogólne funkcjonowanie mózgu.
Semax wyróżnia się sposobem działania. Nie aktywuje ani nie blokuje bezpośrednio jednego konkretnego receptora, jak większość konwencjonalnych leków. Działa jako neuromodulator – precyzyjnie reguluje wrażliwość istniejących układów neuroprzekaźnikowych, nie zalewając ich sztucznymi sygnałami. Można to porównać do ściemniacza światła zamiast zwykłego włącznika.
To właśnie ta zdolność do precyzyjnego dostrajania jest uważana za podstawę zarówno korzystnego profilu bezpieczeństwa Semax, jak i jego szerokiego działania neuroprotekcyjnego i poznawczego. Dostępne dowody naukowe pochodzą głównie z badań na zwierzętach, z ograniczoną, lecz obiecującą liczbą danych klinicznych z badań na ludziach. Udział poszczególnych układów neuroprzekaźnikowych w ogólnym profilu działania Semax pozostaje aktywnym obszarem badań.
Czy Semax wpływa na dopaminę?
Semax wpływa na układ dopaminowy, jednak jego działanie jest pośrednie i modulacyjne – nie bezpośrednie ani stałe. Dopamina to neuroprzekaźnik ściśle związany z motywacją, nagrodą, ruchem i reakcją mózgu na przyjemne doświadczenia.
W normalnych warunkach spoczynkowych Semax podawany samodzielnie nie zmienia w sposób istotny poziomów dopaminy ani w tkance mózgowej, ani w płynie zewnątrzkomórkowym. Nie wpływa też na poziomy dwóch głównych produktów rozpadu dopaminy – DOPAC i HVA – w prążkowiu, czyli obszarze mózgu odpowiedzialnym za ruch i przetwarzanie nagród [1].
Sytuacja zmienia się jednak, gdy Semax jest podawany przed substancją aktywującą układ dopaminowy. W badaniach mikrodializy – technice polegającej na wszczepieniu miniaturowej sondy do mózgu w celu pomiaru składu płynu mózgowego w czasie rzeczywistym – Semax podany 20 minut przed D-amfetaminą wywołał znacznie wyższe szczytowe stężenie dopaminy niż sama amfetamina. Jednocześnie odnotowano wyraźniejszy spadek poziomów DOPAC, co wskazuje na intensywniejsze uwalnianie i wykorzystanie dopaminy [2].
Wyniki badań behawioralnych na myszach potwierdziły te obserwacje. Połączenie Semax z D-amfetaminą zwiększyło aktywność ruchową zwierząt do 261% wartości wyjściowej, podczas gdy sama amfetamina osiągnęła jedynie 182% [2]. Potwierdza to, że Semax istotnie wzmacnia odpowiedź układu dopaminowego na stymulację.
Prosta analogia: Semax działa jak zwiększenie głośności głośnika. Gdy muzyka gra, brzmi głośniej – ale samo podkręcenie głośności nie sprawia, że muzyka zaczyna grać. Układ dopaminowy staje się bardziej reaktywny, lecz Semax nie wywołuje samodzielnie uwalniania dopaminy.
Taki profil działania jest zgodny z obserwacją, że Semax nie wydaje się wywoływać zachowań uzależnieniowych ani prowadzić do rosnącej zależności układu dopaminowego od jego obecności. Dokładny mechanizm tego efektu wzmacniającego nie został jeszcze w pełni wyjaśniony. Badacze sugerują, że może on obejmować receptory melanokortynowe wpływające na pobudliwość neuronów dopaminergicznych lub pośrednie efekty poprzez układ serotoninowy, który reguluje obwody dopaminowe.
Wszystkie obecne dane dotyczące Semax i dopaminy pochodzą wyłącznie z badań na zwierzętach. Brak jest dotychczas bezpośrednich dowodów z badań na ludziach.
Czy Semax wpływa na serotoninę?
Semax wywiera mierzalne i powtarzalne efekty na układ serotoninowy, ze szczególnie wyraźnym wzrostem aktywności serotoninowej w prążkowiu. Serotonina to neuroprzekaźnik odpowiedzialny za regulację nastroju, lęku, snu i dobrostanu emocjonalnego.
W tkance prążkowia szczura Semax podany w dawce 0,15 mg/kg w iniekcji dootrzewnowej spowodował istotny wzrost tkankowych poziomów 5-HIAA o około 25% po 2 godzinach od podania [1]. 5-HIAA to główny produkt rozpadu serotoniny – jego wyższe poziomy wskazują na intensywniejszą produkcję i zużycie serotoniny.
Pomiary w czasie rzeczywistym przy użyciu mikrodializy wykazały jeszcze wyraźniejszy efekt. Zewnątrzkomórkowe poziomy 5-HIAA w płynie otaczającym komórki mózgowe wzrosły stopniowo do około 180% wartości wyjściowej w ciągu 1–4 godzin po podaniu Semax [1]. Ten trwały wzrost sugeruje, że Semax nasila uwalnianie i metabolizm serotoniny w tym obszarze mózgu, a nie jedynie spowalnia jej usuwanie.
Efekty serotoninergiczne mogą częściowo wyjaśniać udokumentowane właściwości przeciwlękowe i antydepresyjne Semax. W badaniach na zwierzętach przewlekłe podawanie Semax przez 10–14 dni wywoływało u szczurów zmiany behawioralne wskazujące na zmniejszenie lęku i działanie zbliżone do antydepresantów. Badacze przypisali to przynajmniej częściowo aktywacji układu serotoninowego oraz zwiększonej produkcji BDNF w hipokampie [3].
Ponadto w modelu, w którym noworodki szczurów były narażone na fluwoksaminę – lek z grupy SSRI zmieniający sposób przetwarzania serotoniny we wczesnym okresie rozwoju mózgu – podanie Semax zmniejszyło zachowania lękowe, poprawiło zdolność uczenia się i znormalizowało zaburzone poziomy substancji chemicznych w mózgu dotkniętych zwierząt [4]. Sugeruje to, że Semax może pomagać w przywracaniu równowagi układu serotoninowego, gdy została ona zaburzona w krytycznych okresach rozwojowych.
Precyzyjne mechanizmy receptorowe leżące u podstaw tej normalizacji nie są jeszcze w pełni poznane. Wszystkie dostępne dane dotyczące działania serotoninergicznego Semax pochodzą z badań na zwierzętach.
Czy Semax wpływa na GABA?
Semax bezpośrednio moduluje układ GABAergiczny – jeden z głównych hamujących układów neuroprzekaźnikowych mózgu. GABA, czyli kwas gamma-aminomasłowy, to główny neuroprzekaźnik hamujący mózgu. Redukuje aktywność komórek nerwowych i pomaga utrzymać stan spokoju i równowagi.
Dowody na działanie Semax na GABA pochodzą z dwóch rodzajów badań: elektrofizjologicznych, mierzących rzeczywistą aktywność elektryczną komórek nerwowych, oraz badań wiązania radioligandów, w których radioaktywnie znakowane cząsteczki pozwalają określić, gdzie i jak substancja łączy się z receptorami.
W eksperymentach elektrofizjologicznych na izolowanych neuronach mózgu szczura Semax w stężeniu 1 mikromola zwiększył prądy elektryczne aktywowane przez GABA w komórkach Purkiniego móżdżku do około 147% ich normalnego poziomu [5]. Komórki Purkiniego to wyspecjalizowane komórki nerwowe w móżdżku – części mózgu odpowiedzialnej za koordynację ruchu i równowagę. Efekt wzmacniający rozwijał się stopniowo i nie ustępował łatwo po usunięciu Semax z preparatu. Wskazuje to na działanie poprzez wewnątrzkomórkowe szlaki sygnałowe, tzw. układy drugich przekaźników, a nie poprzez bezpośrednie otwieranie kanałów jonowych kontrolowanych przez GABA.
Badania wiązania radioligandów potwierdziły, że Semax wpływa zarówno na miejsca wiązania GABA o wysokiej, jak i niższej czułości na błonach komórek nerwowych szczura. Efekty były zależne od dawki i różniły się w zależności od konkretnego miejsca wiązania oraz od tego, czy zwierzę znajdowało się pod wpływem stresu [6]. W warunkach ostrego stresu wywołanego unieruchomieniem Semax podany wcześniej modyfikował wywołane stresem zmiany w wiązaniu receptorów GABA, choć nie zapobiegał im całkowicie [6].
Warto zaznaczyć, że inne syntetyczne peptydy strukturalnie zbliżone do Semax – w tym ACTH(6-9)PGP i ACTH(7-10)PGP – również wykazywały działanie na receptory GABA. Sugeruje to, że zdolność modulowania układu GABAergicznego jest wspólną cechą całej klasy peptydów pochodnych ACTH, a nie zjawiskiem charakterystycznym wyłącznie dla Semax [6].
Efekty GABAergiczne prawdopodobnie przyczyniają się do przeciwlękowych właściwości Semax oraz jego zdolności do ochrony komórek mózgowych podczas uszkodzeń ekscytotoksycznych – rodzaju uszkodzeń spowodowanych nadmierną stymulacją neuronów. Zależność ta wymaga jednak dalszych bezpośrednich badań. Wszystkie dane dotyczące GABA pochodzą z badań na zwierzętach i laboratoryjnych hodowlach komórkowych.
Czy Semax wpływa na glicynę?
Semax hamuje przekaźnictwo glicynergiczne w określonych obszarach mózgu – co stanowi ważne dopełnienie jego wzmacniającego działania na układ GABAergiczny. Glicyna to kolejny neuroprzekaźnik hamujący, który – podobnie jak GABA – redukuje aktywność komórek nerwowych, jednak działa poprzez inne receptory i jest szczególnie aktywna w hipokampie i rdzeniu kręgowym.
W tym samym badaniu elektrofizjologicznym, w którym analizowano prądy GABA, Semax w stężeniach 0,1 i 1 mikromola zmniejszył amplitudę chlorkowych prądów aktywowanych przez glicynę w neuronach piramidowych hipokampa – głównego centrum pamięci mózgu – odpowiednio do około 68% i 43% ich normalnego poziomu [5]. Efekt był zależny od stężenia: im wyższe stężenie Semax, tym silniejsze zahamowanie aktywności receptorów glicynowych.
Podobnie jak w przypadku działania na GABA, hamowanie rozwijało się powoli i trudno je było odwrócić, co ponownie wskazuje na mechanizm oparty na drugich przekaźnikach, a nie bezpośrednie blokowanie receptorów.
Fakt, że Semax jednocześnie zwiększa aktywność GABA w jednym obszarze mózgu i hamuje aktywność glicyny w innym, wskazuje na złożoną, specyficzną regionalnie rolę regulacyjną. Zamiast globalnie hamować lub pobudzać mózg, Semax dostosowuje równowagę przekaźnictwa hamującego w zależności od obszaru, w którym działa. Może to przyczyniać się do jego specyficznych efektów na pobudliwość neuronów i plastyczność synaptyczną – zdolność mózgu do wzmacniania i osłabiania połączeń między komórkami nerwowymi.
Wyniki te opierają się wyłącznie na danych elektrofizjologicznych z izolowanych neuronów szczura.
Czy Semax wpływa na acetylocholinę?
Semax moduluje układ cholinergiczny – zarówno poprzez bezpośrednie oddziaływanie na receptory, jak i pośredni wpływ na przeżycie neuronów produkujących acetylocholinę. Acetylocholina odgrywa kluczową rolę w uczeniu się, pamięci, uwadze i kontroli mięśni. Jest też neuroprzekaźnikiem najbardziej dotkniętym w przebiegu choroby Alzheimera.
Badania wiązania radioligandów z użyciem radioaktywnie znakowanej acetylocholiny potwierdziły, że Semax moduluje wiązanie receptorów acetylocholinowych w preparatach mózgu szczura w sposób zależny od dawki [6]. Na poziomie komórkowym Semax zwiększył przeżycie cholinergicznych neuronów podstawnej części przodomózgowia – grupy komórek nerwowych produkujących acetylocholinę, kluczowych dla pamięci i uwagi – w hodowlach pierwotnych o około 1,5 do 1,7 razy [7]. Stymulował również aktywność acetylotransferazy cholinowej – enzymu odpowiedzialnego za syntezę acetylocholiny wewnątrz neuronów – w hodowlach tkankowych podstawnej części przodomózgowia w stężeniu 100 nanomoli [7]. Co istotne, efekty te były selektywne: Semax nie wpływał na całkowitą liczbę neuronów GABAergicznych ani na inne komórki nerwowe w tych samych hodowlach, co sugeruje specyficzne ukierunkowanie na neurony cholinergiczne.
Badania elektrofizjologiczne dostarczyły dodatkowych informacji. Hamujący wpływ Semax na aktywność elektryczną neuronów kory mózgowej u kotów był związany ze stymulacją receptorów M-cholinergicznych, czyli receptorów muskarynowych, w ponad połowie badanych przypadków [8]. Sugeruje to, że aktywacja receptorów muskarynowych odgrywa istotną rolę w neuromodulacyjnym działaniu Semax na poziomie kory mózgowej.
Zdolność Semax do wspierania przeżycia neuronów cholinergicznych, zwiększania syntezy acetylocholiny i modulowania receptorów muskarynowych pozwala uznać jego działanie cholinergiczne za potencjalnie ważny składnik efektu prokognitywnego – szczególnie w stanach niedoboru cholinergicznego. Wszystkie dostępne dane pochodzą wyłącznie z badań na zwierzętach i hodowlach komórkowych.
Czy Semax wpływa na norepinefrynę?
Dowody na działanie Semax na norepinefrynę – zwaną też noradrenaliną – są bardziej ograniczone i w dużej mierze pośrednie w porównaniu z jego wpływem na inne układy neuroprzekaźnikowe. Norepinefryna reguluje czujność, uwagę, reakcję stresową oraz ciśnienie krwi.
Wczesne badania nad strukturalnym prekursorem Semax – analogiem ACTH(4-7)-Pro-Gly-Pro – wykazały, że jego podanie obniżało zawartość noradrenaliny w korze mózgowej i innych obszarach mózgu. Wyrównywało też normalnie asymetryczny rozkład noradrenaliny między prawą a lewą półkulą, bez istotnego wpływu na rozkład serotoniny [9]. W badaniach po resuscytacji po wstrząsie krwotocznym – stanie zagrożenia życia spowodowanym ciężką utratą krwi – dożylny Semax wpływał na dynamikę amin biogennych w pniu mózgu i śledzionie w okresie rekonwalescencji. W tych badaniach efekty na układ serotoninowy były wyraźniejsze niż na układy katecholaminergiczne, do których należą zarówno norepinefryna, jak i dopamina [10].
Badania dotyczące niedotlenienia prenatalnego wykazały, że niedobór tlenu przed urodzeniem zaburza rozwój układów norepinefrynowego i dopaminowego w mózgu noworodków. Donosowe podanie Semax ciężarnym samicom zapobiegało tym zaburzeniom poziomów katecholamin w ośrodkowym układzie nerwowym potomstwa w okresie postnatalnym [11].
Dostępne dane sugerują, że Semax wpływa na aktywność układu noradrenergicznego – szczególnie w warunkach stresu, niedotlenienia lub innych wyzwań patologicznych. Efekty te są jednak mniej bezpośrednie i mniej konsekwentnie udokumentowane niż działanie serotoninergiczne czy GABAergiczne. Dotychczas żadne badania nie mierzyły bezpośrednio zewnątrzkomórkowych stężeń norepinefryny w odpowiedzi na Semax przy użyciu mikrodializy lub podobnych technik pomiarów w czasie rzeczywistym, co stanowi istotną lukę w obecnej bazie dowodów. Wszystkie dostępne dane pochodzą z badań na zwierzętach.
Czy Semax wpływa na kortyzol i oś HPA?
Semax nie stymuluje produkcji kortyzolu i jest klasyfikowany jako peptyd niehormonal ny – nie wykazuje aktywności steroidogennej swojego hormonu macierzystego, ACTH. Wczesne badania farmakologiczne potwierdziły, że w odróżnieniu od ACTH(5-10), analog ACTH(4-7)-PGP nie wykazywał aktywności steroidogennej ani melanocytostymulującej, co od początku jego opracowywania stanowiło podstawę jego niehormonal nej klasyfikacji [12].
Zamiast aktywować oś HPA – centralny układ hormonów stresu, biegnący od podwzgórza przez przysadkę mózgową do nadnerczy – Semax wydaje się tłumić jej nadmierną aktywność w warunkach przewlekłego stresu. W modelu chronicznego nieprzewidywalnego stresu u samców szczurów leczenie Semax odwróciło wywołany stresem przerost nadnerczy – nieprawidłowe powiększenie tych gruczołów, będące wiarygodnym fizycznym wskaźnikiem przewlekłej nadaktywacji osi HPA [13]. Jednocześnie Semax cofnął też anhedonię, czyli utratę zdolności odczuwania przyjemności, zahamowanie przyrostu masy ciała oraz obniżenie poziomu BDNF w hipokampie – wszystkie wywołane przez przewlekły stres [13].
Na poziomie podwzgórza – obszaru mózgu inicjującego kaskadę hormonów stresu – podanie Semax przed ekspozycją na stres zmniejszyło ekspresję c-Fos w jądrze przykomorowym podwzgórza u szczurów podatnych na stres [14]. C-Fos to białko używane jako biologiczny marker aktywacji komórki. Niższe poziomy c-Fos w tym obszarze oznaczają słabszą aktywację podwzgórza w odpowiedzi na bodźce stresowe.
W modelu stresu społecznego Semax wykazał również działanie przeciwzapalne na układ odpornościowy: obniżył stężenia prozapalnych białek sygnałowych IL-1β i IL-6, przywrócił poziomy IL-4 oraz zahamował aktywność TGF-β1 i TNF-α [15]. Profil ten jest zgodny z działaniem substancji redukującej, a nie nasilającej, aktywację osi HPA i układu odpornościowego wywołaną stresem.
Potwierdzają to badania, w których szczury poddane stresowi unieruchomienia i otrzymujące Semax w dawkach 50 i 150 mikrogramów na kilogram masy ciała wykazywały niższe stężenia kortykosteronu w surowicy – kortykosteron jest u gryzoni odpowiednikiem ludzkiego kortyzolu – oraz mniejsze strukturalne uszkodzenia ściany okrężnicy wywołane stresem [16]. Dane z badań na ludziach dotyczące tych efektów na oś HPA pozostają ograniczone do pośrednich obserwacji klinicznych.
Jak Semax moduluje wiele układów neuroprzekaźnikowych jednocześnie?
Semax oddziałuje na wiele układów neuroprzekaźnikowych jednocześnie poprzez trzy powiązane mechanizmy: bezpośrednie interakcje z receptorami, pośrednie efekty za pośrednictwem sygnalizacji BDNF i neurotrofinowej oraz szeroką regulację ekspresji genów związanych z neuroprzekaznictwem. To jedno z najbardziej interesujących pytań dotyczących tego peptydu – w jaki sposób jedna mała cząsteczka może działać w tak wielu układach naraz.
Na poziomie ekspresji genów analiza sekwencjonowania RNA w modelu udaru u szczurów wykazała, że Semax reaktywował geny związane z neuroprzekaznictwem, które zostały wyciszone przez niedokrwienie i reperfuzję – uszkodzenie powstające po odcięciu, a następnie przywróceniu przepływu krwi do tkanki mózgowej. Semax skutecznie przywrócił wzorce ekspresji tych genów do poziomu zbliżonego do zdrowej tkanki [17].
W warunkach ostrego stresu podanie Semax wywołało zmiany w aktywności ponad 1500 genów w hipokampie. Zarówno Semax, jak i powiązany peptyd ACTH(6-9)PGP podwyższał aktywność genów obniżonych przez stres i obniżał aktywność genów podwyższonych przez stres [18]. Jest to szeroka, ogólnosystemowa korekta wzorców neuroprzekaznictwa zaburzonych przez stres.
Koncepcja synaktonu pomaga wyjaśnić ten wieloukładowy zasięg. Synakton to Semax wraz z jego aktywnymi produktami rozpadu – HFPGP i PGP – działającymi jako zintegrowany kompleks regulacyjny. Każdy ze składników oddziałuje z odrębnymi, lecz częściowo nakładającymi się miejscami wiązania na błonach komórek nerwowych [19]. Razem wywierają efekt farmakologiczny szerszy niż to, co mógłby osiągnąć sam którykolwiek z fragmentów. Takie wielokierunkowe działanie jest charakterystyczne dla naturalnych peptydów regulacyjnych mózgu i odróżnia Semax od konwencjonalnych leków o pojedynczym celu terapeutycznym.
Zrozumienie, w jaki sposób wszystkie te efekty integrują się i wzajemnie oddziałują u ludzi, pozostaje ważnym priorytetem dla przyszłych badań klinicznych.
Zastrzeżenie
Niniejszy artykuł ma wyłącznie cel edukacyjny i informacyjno-naukowy i nie powinien być interpretowany jako porada medyczna, diagnoza, zalecenie terapeutyczne ani twierdzenie dotyczące skuteczności Semax w leczeniu jakiegokolwiek schorzenia. Semax pozostaje związkiem badawczym w większości krajów, w tym w Stanach Zjednoczonych i większości krajów europejskich, i nie jest zatwierdzony przez Amerykańską Agencję ds. Żywności i Leków (FDA) ani przez Europejską Agencję Leków (EMA) do leczenia żadnego schorzenia medycznego. Jest zatwierdzony i stosowany klinicznie w Rosji i niektórych krajach Europy Wschodniej. Większość dowodów przedstawionych w tym artykule pochodzi z przedklinicznych badań na zwierzętach oraz ograniczonej liczby klinicznych badań na ludziach, z których wiele pochodzi z rosyjskojęzycznej literatury naukowej. Niezbędne są dodatkowe, dobrze zaprojektowane badania kliniczne, aby dokładniej ustalić bezpieczeństwo, skuteczność, mechanizmy działania i długoterminowe efekty Semax u ludzi.
References
[1] Eremin, K. O., Kudrin, V. S., Saransaari, P., Oja, S. S., Grivennikov, I. A., Myasoedov, N. F., & Rayevsky, K. S. (2005). Semax, an ACTH(4-10) analogue with nootropic properties, activates dopaminergic and serotoninergic brain systems in rodents. Neurochemical Research, 30(12), 1493–1500. https://doi.org/10.1007/s11064-005-8826-8
[2] Eremin, K. O., Saransaari, P., Oja, S., & Raevskiĭ, K. S. (2004). Semax potentiates effects of D-amphetamine on the level of extracellular dopamine in the Sprague-Dawley rat striatum and on the locomotor activity of C57BL/6 mice. Eksperimentalnaya i Klinicheskaya Farmakologiya, 67(2), 8–11. PMID: 15188751
[3] Vilenskiĭ, D. A., Levitskaia, N. G., Andreeva, L. A., Alfeeva, L. Yu., Kamenskiĭ, A. A., & Miasoedov, N. F. (2007). Effects of chronic Semax administration on exploratory activity and emotional reaction in white rats. Rossiyskiy Fiziologicheskiy Zhurnal imeni I.M. Sechenova, 93(6), 661–669. PMID: 17850024
[4] Glazova, N. Yu., Manchenko, D. M., Volodina, M. A., Merchieva, S. A., Andreeva, L. A., Kudrin, V. S., Myasoedov, N. F., & Levitskaya, N. G. (2021). Semax, synthetic ACTH(4-10) analogue, attenuates behavioural and neurochemical alterations following early-life fluvoxamine exposure in white rats. Neuropeptides, 86, 102114. https://doi.org/10.1016/j.npep.2020.102114
[5] Sharonova, I. N., Bukanova, Yu. V., Myasoedov, N. F., & Skrebitskii, V. G. (2018). Modulation of GABA- and glycine-activated ionic currents with Semax in isolated cerebral neurons. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 164(5), 612–616. https://doi.org/10.1007/s10517-018-4043-8
[6] Vyunova, T. V., Andreeva, L. A., Shevchenko, K. V., Glazova, N. Yu., Sebentsova, E. A., Levitskaya, N. G., & Myasoedov, N. F. (2023). Synthetic corticotropins and the GABA-receptor system: Direct and delayed effects. Chemical Biology & Drug Design, 101(6), 1393–1405. https://doi.org/10.1111/cbdd.14221
[7] Grivennikov, I. A., Dolotov, O. V., Zolotarev, Yu. A., Andreeva, L. A., Myasoedov, N. F., Leacher, L., Black, I. B., & Dreyfus, C. F. (2008). Effects of behaviorally active ACTH(4-10) analogue — Semax on rat basal forebrain cholinergic neurons. Restorative Neurology and Neuroscience, 26(1), 35–43. PMID: 18431004
[8] Iasnetsov, V. V., Pravdivtsev, V. A., Krylova, I. N., Kozlov, S. B., Provornova, N. A., Ivanov, Yu. V., & Iasnetsov, V. V. (2001). Effect of nootropic agents on impulse activity of cerebral cortex neurons. Eksperimentalnaya i Klinicheskaya Farmakologiya, 64(6), 3–6. PMID: 11871233
[9] Kruglikov, R. I., Orlova, N. V., & Getsova, V. M. (1991). The noradrenaline and serotonin content in symmetrical parts of the normal rat brain and during learning and peptide administration. Zhurnal Vysshei Nervnoi Deyatelnosti imeni I P Pavlova, 41(2), 359–363. PMID: 1651624
[10] Bastrikova, N. A., Shestakova, S. V., Antonova, S. V., Krushinskaia, Ia. V., Goncharenko, E. N., Kudriashova, N. Yu., Novoderzhkina, I. S., Sokolova, N. A., & Kozhura, V. L. (1999). The biogenic amine content of rat tissues in the postresuscitation period following hemorrhagic shock and the effect of the preparation semax. Patologicheskaya Fiziologiya i Eksperimentalnaya Terapiya, (3), 19–22. PMID: 10498989
[11] Maslova, M. V., Graf, A. V., Sokolova, N. A., Goncharenko, E. N., Shestakova, S. V., Kudryashova, N. Yu., & Andreeva, L. A. (2003). Effect of acute progestational hypoxia on the content of biogenic amines in the brain of albino rat pups: Peptide correction. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 136(2), 123–125. https://doi.org/10.1023/a:1026346302541
[12] Ponomareva-Stepnaia, M. A., Porunkevich, E. A., Skuin’sh, A. A., Nezavibat’ko, V. N., & Ashmarin, I. P. (1986). Hormonal activity of the ACTH(4-10) analog — a prolonged-action stimulant of learning. Byulleten Eksperimentalnoi Biologii i Meditsiny, 101(3), 267–268. PMID: 3006824
[13] Inozemtseva, L. S., Yatsenko, K. A., Glazova, N. Yu., Kamensky, A. A., Myasoedov, N. F., Levitskaya, N. G., Grivennikov, I. A., & Dolotov, O. V. (2024). Antidepressant-like and antistress effects of the ACTH(4-10) synthetic analogs Semax and Melanotan II on male rats in a model of chronic unpredictable stress. European Journal of Pharmacology, 984, 177068. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2024.177068
[14] Umriukhin, P. E., Koplik, E. V., Grivennikov, I. A., Miasoedov, N. F., & Sudakov, K. V. (2001). Gene c-Fos expression in brain of rats resistant and predisposed to emotional stress after intraperitoneal injection of the ACTH(4-10) analog — Semax. Zhurnal Vysshei Nervnoi Deyatelnosti imeni I P Pavlova, 51(2), 220–227. PMID: 11548604
[15] Yasenyavskaya, A. L., Samotrueva, M. A., Tsibizova, A. A., Bashkina, O. A., Myasoedov, N. F., & Andreeva, L. A. (2021). The influence of Selank on the level of cytokines under the conditions of „social” stress. Current Reviews in Clinical and Experimental Pharmacology, 16(2), 162–167. https://doi.org/10.2174/1574884715666200704152810
[16] Svishcheva, M. V., Mishina, Ye. S., Medvedeva, O. A., Bobyntsev, I. I., Mukhina, A. Yu., Kalutskii, P. V., Andreeva, L. A., & Myasoedov, N. F. (2021). Morphofunctional state of the large intestine in rats under conditions of restraint stress and administration of peptide ACTH(4-7)-PGP (Semax). Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 170(3), 384–388. https://doi.org/10.1007/s10517-021-05072-z
[17] Filippenkov, I. B., Stavchansky, V. V., Denisova, A. E., Yuzhakov, V. V., Sevan’kaeva, L. E., Sudarkina, O. Yu., Dmitrieva, V. G., Gubsky, L. V., Myasoedov, N. F., Limborska, S. A., & Dergunova, L. V. (2020). Novel insights into the protective properties of ACTH(4-7)PGP (Semax) peptide at the transcriptome level following cerebral ischaemia-reperfusion in rats. Genes, 11(6), 681. https://doi.org/10.3390/genes11060681
[18] Filippenkov, I. B., Stavchansky, V. V., Glazova, N. Yu., Sebentsova, E. A., Remizova, J. A., Valieva, L. V., Levitskaya, N. G., Myasoedov, N. F., Limborska, S. A., & Dergunova, L. V. (2021). Antistress action of melanocortin derivatives associated with correction of gene expression patterns in the hippocampus of male rats following acute stress. International Journal of Molecular Sciences, 22(18), 10054. https://doi.org/10.3390/ijms221810054
[19] Vyunova, T. V., Andreeva, L. A., Shevchenko, K. V., & Myasoedov, N. F. (2017). Synacton and individual activity of synthetic and natural corticotropins. Journal of Molecular Recognition, 30(5). https://doi.org/10.1002/jmr.2597